目的 通过正交设计优选出闪式提取法提取连翘苷的最优工艺。方法 以提取物中连翘苷含量为指标,以乙醇浓度、料液比、提取时间为考察因素,采用正交实验法优选连翘苷的闪提最优工艺;对闪式提取和回流提取连翘苷后的药渣提取多糖,并比较多糖的提取率。结果 闪式提取的最佳工艺为:电压120 V,加10倍量70%乙醇闪式提取1 min,提取2次。此条件下连翘苷的含量为4.50 mg·g-1;回流法提取连翘苷的含量为4.06 mg·g-1。闪式提取和回流提取法的药渣中多糖的出膏率分别为2.16%,1.51%。结论 闪式提取的连翘苷的含量及药渣中多糖的出膏率均高于回流提取,该工艺稳定可行。
Objective To optimize homogenate extraction process of
连翘在我国已经有近千年的药用历史,被视为“疮家要药”。连翘为木犀科植物连翘
JHBE-50闪式提取器(河南金鼎科技发展有限公司),Waters e2695高效液相色谱仪(配Waters2998紫外检测器,Empower色谱工作站);KH2200DB型超声波清洗器(江苏省昆山市超声仪器有限公司);XS105型电子分析天平(瑞士梅特勒仪器有限公司,感量:0.01 mg);SHE-D(III)循环水式真空泵(巩义市予华仪器有限责任公司);数显电热恒温水浴锅(常州国华电器有限公司);Evolution 260 Bio紫外-可见分光光度计(赛默飞世尔科技公司)。
连翘苷对照品(批号:110821-201112),
2.1.1 色谱条件与系统适用性实验 色谱柱为Venusil XBP-C18(天津博纳艾杰尔科技有限公司,4.6 mm×250 mm,5 μm);流动相:乙腈-水(25∶75),流速:1.0 mL·min-1;柱温为25 ℃;检测波长:277 nm;理论板数按连翘苷峰计算应不低于3 000;连翘苷对照品及供试品的色谱图见
2.1.2 对照品溶液的制备 精密称定干燥至恒重的连翘苷对照品7.10 mg,置25 mL量瓶,加甲醇溶解并稀释到刻度,作为对照品溶液(0.284 mg·mL-1)。
2.1.3 供试品溶液的制备 取提取物25 mg,精密称定,置5 mL量瓶,加甲醇使溶解并稀释至刻度。再用孔径0.45 μm 微孔滤膜过滤,取续滤液,即得供试品溶液。
2.1.4 线性关系考察 精密量取连翘苷对照品溶液0.5,1.0,2.0,3.0,4.0,5.0 mL,分别置10 mL量瓶中,加甲醇稀释至刻度,摇匀。精密吸取对照品溶液以及上述稀释对照品溶液10 μL,注入液相色谱仪,按上述色谱条件测定,以对照品进样质量浓度(mg·mL-1)为横坐标,以峰面积为纵坐标,绘制标准曲线:
2.1.5 精密度实验 精密量取同一对照品溶液,重复进样6次,每次10 μL,记录峰面积,计算其相对标准偏差(RSD)为1.09%,表明仪器精密度良好。
2.1.6 稳定性实验 取供试品溶液分别于配制后的0,1,2,4,6,8,12 h进样,测定连翘苷的峰面积,RSD为1.62%,说明供试品溶液在常温下12 h内稳定。
2.1.7 重复性实验 取样品6份制备供试品溶液,并按“2.1.1”项下色谱条件进样,计算结果:连翘苷含量的RSD为1.57%,表明方法的重复性良好。
2.1.8 加样回收率实验 取已知含量的同一批样品9份,分别置于5mL量瓶中,按照供试品测定的连翘苷的含量,以其80%,100%,120%比例精密加入对照品贮备液,挥干甲醇后加入样品,按供试品制备方法处理并按“2.1.1”项下色谱条件进样测定,结果平均回收率为101.7%,RSD为2.61%,见
2.2.1 考察因素和水平的确定 根据预实验的结果,固定闪式提取电压为120 V和提取次数为2次,选取影响提取的乙醇浓度(A)、料液比(B)、提取时间(C)为考察因素,以提取物中连翘苷的含量为考察指标,因素和水平见
2.2.2 实验方法 取连翘药材粗粉,在120 V电压下按L9(34)正交表,分别闪式提取2次,合并滤液,回收乙醇,用石油醚萃取2次,取下层溶液挥去石油醚,浓缩至浸膏,后冷冻干燥,得粗提物。取本品粗提物约25 mg,精密称定,精密加入甲醇并稀释至刻度,摇匀,滤过,取续滤液,按“2.1.1”项下色谱条件进样测定,正交实验结果见
由
为验证正交设计实验中最优工艺的重现性和可靠性,分别取连翘50 g,用闪提最优工艺,即:在120 V电压下,加10倍70%乙醇闪式提取1 min,平行操作3份,药材中连翘苷的含量分别为 4.51,4.49,4.50 mg·g-1,可见其可靠性和重复性良好。
目前连翘普遍采取加热回流方法提取连翘苷,根据文献报道加热回流提取连翘中连翘苷的最优工艺为:6倍量70%的乙醇提取1 h[10-11]。按此条件制备3批样品,并按照 “2.1.1”项方法测定,计算平均结果与闪式提取的最优结果。闪式提取法虽然使用溶剂量较大,但是所用的时间比较短,而且连翘苷的量和转移率也较回流提取有所提高,由此可知从连翘中提取连翘苷,闪式提取优于回流提取。见
2.5.1 回流提取法 提取样品多糖分别将闪式提取和回流提取后的药渣烘干混匀,加药渣质量10倍量体积的超纯水回流提取两次,合并滤液,将滤液浓缩至料液比1∶1.5~1∶2(原料重∶溶液体积),加入乙醇使醇浓度为80%(
2.5.2 对照品溶液的配制 精密称定干燥至恒重的无水葡萄糖对照品33.36 mg,加至100 mL量瓶中,加水溶解并定容至刻度,作为对照品溶液。
2.5.3 供试品溶液的配制 称取“2.5.1” 项下所得多糖粗提物2 mg,超纯水溶解于25 mL量瓶中定容摇匀,即得。
2.5.4 最大吸收波长的选择 分别精密量取对照品、供试品溶液和超纯水各2 mL置于具塞试管中,精密加入5%苯酚试液1 mL,摇匀,迅速加入硫酸 5 mL,摇匀放置10 min,置40 ℃水浴中保温15 min,取出,迅速冷却至室温[1],其中,以超纯水作为空白液,照分光光度法(《中华人民共和国药典》2010年版一部附录ⅤA),用紫外-可见分光光度计于400~800 nm进行扫描。结果显示,葡萄糖对照品溶液和供试品溶液最大吸收波长均为490 nm。结果见
2.5.5 标准曲线的绘制 精密量取对照品溶液0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mL分别置于具塞试管中,加水补足至2 mL,照“2.5.4”项下方法自“精密加入5%苯酚……”操作,以相应的试剂做空白,在490 nm波长处测定吸光度。以吸光度为纵坐标,显色时多糖的浓度为横坐标,绘制标准曲线:
2.5.6 连翘多糖的含量测定和出膏率的计算 称取样品多糖2 mg,超纯水溶解于25 mL量瓶中定容摇匀,精密吸取2 mL溶液于具塞试管中,按“2.5.2”项下方法测定吸光度,代入标准曲线计算样品溶液中葡萄糖平均质量浓度(
2.5.7 两种药渣中连翘多糖的提取比较 连翘闪式提取药渣与回流提取药渣提取多糖的比较结果见
本研究建立了连翘苷的闪式提取工艺,以连翘苷转移率为指标,采用正交实验得到最佳工艺条件为:工作电压 120 V,加10倍70%乙醇闪式提取1 min,提取2次。与传统的乙醇回流法相比,闪式提取在连翘苷转移率、操作简单、费时短等方面具有明显的优势,且方法简单可靠,重复性好。还用闪式提取法先对连翘苷的提取工艺进行优化,然后采用回流提取法对提取过连翘苷的药渣进行多糖提取,如此不仅能提高连翘药材的综合利用率,又能提高其各自的提取效率,大大降低能耗。在连翘苷最优工艺选择的最适合的乙醇浓度,不仅能最大限度地提取连翘苷外,还可以尽量减少多糖的溶出;并且该浓度乙醇可以有效地带走大部分色素以及部分脂类物质,即在连翘苷的提取过程中就将下一步多糖提取过程中的杂质除去,减少提纯的步骤,降低成本,增加该工艺的可行性。闪式提取器是根据组织破碎原理设计而成的一种操作简单、提取效率高、节约资源的新型提取器,它利用高速机械外力迅速破坏植物细胞组织,使有效成分与溶剂充分接触,可用在植物软硬材料的快速提取方面[13],是一种具有很大发展潜力的新兴提取技术。笔者在预实验时发现提取次数的增加并没有明显提高连翘苷的转移率,因此将提取次数定为两次。由于提取次数的增加会使药液量增加,导致浓缩时耗时耗能,并且造成药物粉碎过细,又会对后期的过滤带来很大麻烦。
The authors have declared that no competing interests exist.