目的 优选富集纯化黄芩籽种壳总黄酮的大孔树脂及工艺条件。方法 采用高效液相色谱(HPLC)法测定野黄芩苷含量。以野黄芩苷作指标成分,运用吸附-解吸实验优选大孔树脂型号;以单因素设计和正交实验考察大孔树脂富集纯化黄芩籽种壳总黄酮工艺。结果 AB-8型大孔树脂吸附-洗脱效率最高,较理想的纯化工艺条件为:上样浓度30.0 g·L-1,最佳吸附量0.3 g·g-1,吸附流速1.0 mL·min-1,树脂柱径高比1∶3,除杂需纯化水量20 BV,5 BV 70%乙醇洗脱。结论 该工艺条件下AB-8型大孔树脂富集纯化黄芩籽种壳总黄酮效率较高,工艺条件科学、简便,重复性好。
Objective To optimize enrichment and purification technology of total flavonoids from seed shell of
黄芩(
RE52-99型旋转蒸发仪(上海亚荣生化仪器厂),SHD-Ⅲ型循环水式多用真空泵(保定高新区阳光科教仪器),TD2001型电子天平(天津市天马仪器厂,感量:十万分之一),Spectrum-752型紫外分光光度计(上海光谱仪器有限公司),Agilent1200高效液相色谱仪(自动进样器,四元泵,柱温箱,DAD检测器,Agilent 公司,美国);CHRIST实验室型冷冻干燥机(德国MARTIN CHRIST);KQ-100E超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司);HC-2062高速离心机(科大创新股份有限公司中佳分公司)。
干燥黄芩籽种壳(中国药材集团承德有限公司提供,由承德医学院中药研究所赵春颖副教授鉴定),新制纯化水,乙醇(分析纯),甲醇(色谱纯),野黄芩苷标准品(购于中国食品药品检定研究院,批号:110842-200605,含量≥98.99%),D-101,AB-8型大孔树脂(天津兴南允能高分子技术有限公司),XDA-1,XDA-16型大孔树脂(西安蓝晓科技新材料股份有限公司),D201,DM130,ADS-7,ADS-17型大孔树脂(郑州勤实科技有限公司),HPD-100,HPD-400型大孔树脂(沧州宝恩吸附材料科技有限公司),ME-1,ME-2型大孔树脂(天津欧瑞生物科技有限公司)。
2.1.1 对照品溶液的制备 精密称取野黄芩苷标准品3.10 mg,置25 mL量瓶中,加甲醇至刻度线处,摇匀,静置,即得。
2.1.2 色谱条件 色谱柱ZORBAX SB-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm),流动相为甲醇∶水∶甲酸(20:80:0.4%),流速0.8 mL·min-1,柱温20.0 ℃,检测波长335 nm,进样量10.0 μL。在此色谱条件下,野黄芩苷与其他色谱峰可完全分离。见
2.1.3 线性关系考察 设置野黄芩苷对照品溶液进样量分别为2.0,4.0,6.0,8.0,10.0,12.0 μL,在上述色谱条件下,依次自动进样,记录色谱图、峰面积(
2.1.4 总黄酮粗提物的制备 称取干燥黄芩籽种壳1.0 kg,置提取设备中,以60%乙醇8 L回流1.0 h,重复操作2次,滤过,合并,烘干,得黄芩籽种壳总黄酮干浸膏371.2 g。
2.1.5 样品考察 取“2.1.4”项下干浸膏适量制备供试品溶液,分别于配液后2.0,4.0,6.0,8.0,24.0 h按照“2.1.2”项色谱条件自动进样10.0 μL,检测对应不同时间下的色谱峰面积。结果显示供试品溶液中野黄芩苷峰面积的RSD=0.99%,表明供试品溶液在24.0 h内稳定性良好。
2.1.6 上样液的制备 精密称取“2.1.4”项下干粉适量,加入新制纯化水配成30.0 g·L-1的生药液,布氏漏斗抽滤,取抽滤液,即得(野黄芩苷质量浓度为1.17 g·L-1)。
2.2.2 树脂型号的筛选 称预处理的12种大孔树脂各10.0 g于100 mL具塞锥形瓶中,分别加入“2.1.6” 项下上样液30 mL静态吸附,室温放置22 h,每2.5 h 振摇一次。抽滤,取续滤液适量,高效液相色谱(HPLC)法测定野黄芩苷浓度,计算树脂吸附率。上述滤出树脂转置100 mL具塞锥形瓶,加95%乙醇60 mL静态解吸,室温放置22 h,每2.5 h振摇一次。测定解吸液野黄芩苷浓度,计算洗脱率。计算公式:吸附率=(
2.3.1 上样液浓度的确定 称取预处理的AB-8型大孔树脂4份,每份10.0 g,湿法装柱,分别配制10.0,20.0,30.0,40.0 g·L-1生药浓度的药液上样,保持上样量和体积流量相同,考察不同上样液浓度对AB-8型大孔树脂动态吸附效果的影响,HPLC法测定洗脱液中野黄芩苷浓度;结果见
2.3.2 上样量考察 称取已预处理AB-8型大孔树脂10.0 g,配制生药浓度为30.0 g·L-1的药液上样,分段收集流出液。每3 mL为一流份,收集17份。HPLC法依次测定各个流份中野黄芩苷浓度。以流份为横坐标,流出液中野黄芩苷质量为纵坐标,绘制野黄芩苷泄露曲线,见
2.3.3 正交实验考察 以径高比、吸附流速和洗脱流速为目标因素,设计L9(34)正交实验表进行考察,因素水平见
称取已预处理AB-8型大孔树脂10.0 g共9份,按
2.3.4 水洗体积考察 称取已预处理AB-8型大孔树脂10.0 g(径高比1:3),30.0 g·L-1药液30 mL上样,吸附流速1.0 mL·min-1,加新制纯化水除杂,水洗液每4 BV(60 mL)收集1份,共7份,HPLC法测定每份中野黄芩苷含量,结果见
2.3.5 洗脱剂考察 取5份上样液各30 mL,按上述优化工艺条件上样,加新制纯化水20 BV除杂,分别用体积分数为60%,65%,70%,75%,80%乙醇溶液洗脱,收集洗脱液,46 ℃烘箱烘干,称重记录。加15 mL纯水溶解,HPLC法测定野黄芩苷浓度,计算固含物中野黄芩苷质量,结果见
2.3.6 洗脱剂用量考察 称取已预处理AB-8型大孔树脂10.0 g(径高比1:3),30.0 g·L-1药液30 mL上样,吸附流速1.0 mL·min-1,加新制纯化水20 BV除杂,70%乙醇1.0 mL·min-1 流速洗脱,每份收集15 mL,共收集8份,旋蒸去乙醇,加纯化水15 mL溶解,HPLC测定各个流份中野黄芩苷浓度,计算洗脱液野黄芩苷质量,结果见
称取3份已预处理AB-8型大孔树脂各10.0 g(径高比1:3),30.0 g·L-1药液30 mL上样,吸附流速1.0 mL·min-1,新制纯化水20BV除杂,5 BV 70%乙醇1.0 mL·min-1 流速洗脱,HPLC测定各个流份中野黄芩苷浓度。经计算,洗脱液中野黄芩苷质量分数分别为59.72%,58.67%,59.12%;洗脱液经干燥处理后,野黄芩苷纯度分别为61.94%,60.82%,60.79%。采用紫外分光光度(ultraviolet spectrophotometry,UV)法335 nm处测定回流提取物中总黄酮纯度分别为8.26%,7.78%,8.00%,而纯化后干粉中总黄酮纯度分别为99.16%,99.43%,99.76%,表明AB-8型大孔吸附树脂对黄芩籽种壳中总黄酮富集纯化效果良好,且该工艺稳定可靠。
利用紫外分光光度法对黄芩籽种壳提取物的甲醇溶液和野黄芩苷对照品液进行全波长光谱扫描,发现黄芩籽种壳提取物在271和330 nm附近有最大吸收;野黄芩苷对照品在335 nm附近有最大吸收,因此选择335 nm作为测定波长,灵敏度好,误差较小。在此波长处,黄芩籽种壳提取物HPLC色谱图显示,提取物中主要含有野黄芩苷等黄酮类化合物,故选择野黄芩苷作为指标成分。
用大孔吸附树脂法研究了黄芩籽种壳总黄酮的纯化工艺。选择了12种不同极性、孔径、比表面积等性能参数各异的国产大孔吸附树脂,比较其对黄芩籽种壳总黄酮的吸附-洗脱性能。静态吸附实验结果表明,相比其他类型树脂,弱极性的大孔吸附树脂对黄芩籽种壳总黄酮具有较好的吸附效果。选取静态吸附效果较理想的AB-8型大孔吸附树脂进行动态吸附-解吸工艺筛选,优化后较为理想的纯化工艺条件为:上样浓度30.0 g·L-1,最佳吸附量0.3 g·g-1,吸附流速1.0 mL·min-1,树脂柱径高比1:3,除杂需纯化水量20 BV,70%乙醇1.0 mL·min-1流速洗脱,收集洗脱液。该法优选的纯化工艺稳定性好,提取效率高,适于黄芩籽种壳总黄酮的富集纯化。
黄酮类化合物对光、热、湿敏感,易分解变质[11],故经富集纯化制备的黄芩籽种壳总黄酮应以干粉状态避光、低温、干燥保存。
The authors have declared that no competing interests exist.