目的 考察穿山龙提取物中薯蓣皂苷的在体肠吸收特性。方法 运用大鼠在体单向灌流模型,采用高效液相色谱法测定灌流液中薯蓣皂苷含量,分别考察不同肠段、药物浓度和P-糖蛋白(P-gp)抑制剂对薯蓣皂苷吸收的影响。结果 穿山龙提取物中薯蓣皂苷在大鼠全肠段均有吸收,其在不同肠段的吸收速率常数(
Objective To study absorption characteristic of dioscin from
穿山龙为薯蓣科植物穿龙薯蓣(
雄性SD大鼠,SPF级,体质量(250±20) g,购自第四军医大学实验动物中心,实验动物生产许可证号:SCXK(军)2012-0007。动物饲养于清洁级饲养室,期间自由饮水、摄食,室温20~25 ℃,相对湿度40%~70%,光照周期12 h/12 h,通风良好。
戴安Ultimate 3000液相色谱仪(包括双三元低压梯度泵、自动进样器、柱温箱、UV检测器、Chromeleon工作站);BT100-1F型蠕动泵(保定兰格恒流泵有限公司);KH-400-KDE型高功率数控超声波清洗器(昆山禾创超声仪器有限公司);AR1140电子天平(梅特勒-托利多仪器上海有限公司,感量: 0.000 1 g);HH-2型电热恒温水浴锅(北京科伟永兴仪器有限公司);X1型高速离心机(Gene Company Limited)。
穿山龙提取物(自制,经HPLC法测定薯蓣皂苷含量为1.25%);薯蓣皂苷对照品(中国食品药品检定研究院,含量≥98%,批号:111707-201402);乌拉坦(上海山浦化工有限公司,批号:20150303);盐酸维拉帕米(中国食品药品检定研究院,批号:100223-200102);乙腈(色谱纯,Thermo Fisher Scientific);水为超纯水。
精密称取一定量穿山龙药材,用4.5倍量70%乙醇加热回流提取3次,每次3 h,合并提取液,静置,滤过,减压回收溶剂,60 ℃真空干燥成粉末[4]。测得薯蓣皂苷含量为1.25%。
1.5.1 Krebs-ringer试液(K-R缓冲液) 称取氯化钠(NaCl )7.8 g,氯化钾(KCl)0.35 g,氯化钙(CaCl2)0.37 g,碳酸氢钠(NaHCO3)1.37 g,磷酸二氢钠(NaH2PO4)0.32 g,氯化镁(MgCl2)0.02 g,葡萄糖1.40 g,加水溶解并稀释至1 L,即得[5]。
1.5.2 薯蓣皂苷对照品的配制 取薯蓣皂苷对照品9.9 mg,精密称定,置10 mL量瓶中,用甲醇溶解并定容,制成990 mg·L-1的薯蓣皂苷对照品贮备液。
1.5.3 供试液的配制 取穿山龙提取物适量,精密称定,置于100 mL量瓶中,加入少量K-R液,超声溶解,定容,得薯蓣皂苷浓度为40,80,120 mg·L-1的供试液。
1.5.4 空白肠灌流液的制备 用预热至37 ℃的0.9%氯化钠溶液将肠内容物冲洗干净,再用37 ℃预热的K-R液以1.0 mL·min-1流速冲洗肠道5 min,然后流速降为0.2 mL·min-1,接着以0.2 mL·min-1流速用37 ℃预热的K-R液平衡30 min,使肠道吸收达到稳定状态。进液口用已知质量的装有灌流液的5 mL离心管灌流,出液口处用另一已知质量的5 mL离心管收集流出液,经灌流后即得。
1.6.1 色谱条件 BDS HYPERSIL C18柱(4.6 mm×250 mm, 5 μm);流动相∶乙腈∶水(51∶49);检测波长203 nm;流速:1.0 mL·min-1;柱温:30 ℃;进样量10 μL。
1.6.2 专属性考察 分别取空白肠灌流液、对照品溶液、穿山龙提取物肠灌流液,分别按照“1.6.1”项条件测定,记录色谱图。结果见
1.6.3 线性关系考察 精密吸取对照品贮备液0.1,0.5,1,1.5,2,2.5 mL置10 mL量瓶中,K-R液定容,制成浓度9.9,49.5,99.0,148.5,198.0,247.5 mg·L-1系列对照品溶液,经孔径0.45 μm微孔滤膜滤过,按照“1.6.1”项条件测定。以浓度(
1.6.4 精密度实验 取浓度为49.5,99.0,148.5 mg·L-1的薯蓣皂苷对照品溶液,1 d内每个质量浓度连续测5次,连续测定5 d,计算日内、日间精密度。低、中、高3个浓度的日内精密度RSD为0.28%,0.48%,0.48%;日间精密度RSD为0.88%,1.06%,0.56%。
1.6.5 方法回收率 取浓度为49.5,99.0,148.5 mg·L-1的薯蓣皂苷对照品溶液,按“1.6.1”项色谱条件检测,记录峰面积;代入“1.6.3”项回归方程,计算质量浓度,将所得的质量浓度与实际浓度的比值作为方法回收率。低、中、高3种质量浓度的方法回收率分别为102.80%,100.03%,99.60%。
1.6.6 稳定性实验 取灌流后的样品,于0,3,6,12,24 h进样测定,记录峰面积,样品中薯蓣皂苷RSD为3.2%,结果表明灌流液样品在24 h内稳定性良好。
1.7.1 实验步骤 选取实验前禁食12 h并自由饮水SD大鼠,腹腔注射20%乌拉坦溶液(1.0 g·kg-1)麻醉。沿腹中线打开腹腔,分离出待考察肠段,取约10 cm于两端切口,插管并用细线扎紧。供试液按照“1.5.4”项方法进行灌液,收集流出液。以15 min为一段点,迅速更换一次灌流液和收集液的离心管,共采集8个点,称定质量,计算灌入和收集液质量的变化。实验结束后,剪下被考察肠段,用0.9%氯化钠溶液冲洗干净,测量其长度(
大鼠各肠段的选择[8]:十二指肠段自幽门1 cm处开始向下取10 cm,空肠段自幽门15 cm处开始向下取10 cm,回肠段自盲肠上行20 cm处开始向下取10 cm,结肠段从盲肠后段开始向下取10 cm。
1.7.2 数据分析 本实验采用重量法对供试液流入和流出的体积进行校正,并计算药物吸收常数(
其中,
采用SPSS15.0版统计软件进行统计学分析,计量资料以均数±标准差(
取薯蓣皂苷浓度为80 mg·L-1的供试液,按“1.7.1”项下方法操作,计算薯蓣皂苷在十二指肠、空肠、回肠和结肠的吸收参数,结果见
取薯蓣皂苷浓度为40,80,120 mg·L-1的供试液,以回肠为考察肠段,按“1.7.1”项方法操作,考察不同药物浓度对肠吸收的影响,结果见
大鼠在体单向肠灌流模型保证肠道神经以及内分泌输入的完好无损,同时也保证血液及淋巴液的供应,提高生物活性并且具有较好操作性。本实验以较低流速(0.2 mL·min-1)对4个肠段进行单向灌流,实验条件与口服给药后药物接触的肠道环境较接近,其吸收速率稳定,与人体肠吸收有良好的相关性[9]。
目前常用的体积校正方法有酚红法和重量法。但在长时间的灌流过程中,肠道对酚红存在一定程度的吸收,且酚红本身还可能干扰某些化合物在肠道的转运和分析测定。而重量法通过灌流前后的质量差和密度对体积进行校正,真实反映肠道水分吸收情况。因此,本实验采用重量法对体积的变化进行校正[6]。
P-gp 的外排作用是导致许多药物口服生物利用度低的重要原因。据相关文献报道,P-gp在空肠、远端回肠、结肠的表达依次增加,但因结肠内存在大量的微生物及水解酶,对实验结果造成误差,所以选择在远端回肠段考察P-gp对薯蓣皂苷肠吸收的影响[7,10]。
本实验通过在体单向灌流模型研究穿山龙提取物中薯蓣皂苷的大鼠肠吸收特性,结果表明薯蓣皂苷在大鼠全肠段均有吸收,其在回肠段吸收最好;通过研究不同浓度对薯蓣皂苷吸收的影响,发现薯蓣皂苷吸收不受浓度抑制,其吸收机制可能为被动扩散;通过对比阴性对照组和维拉帕米组的吸收参数,发现薯蓣皂苷可能为P-gp底物。
但是,本研究仍有不足之处。本研究考察穿山龙提取物中薯蓣皂苷的大鼠肠吸收特性,并未考察穿山龙提取物中其他成分对薯蓣皂苷吸收的影响。因此,在未来研究工作中,将进一步对比薯蓣皂苷单体与穿山龙提取物中薯蓣皂苷的肠吸收系数差异,研究穿山龙提取物中其他成分对薯蓣皂苷吸收的影响。
The authors have declared that no competing interests exist.