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医药导报, 2019, 38(3): 380-383
doi: 10.3870/j.issn.1004-0781.2019.03.021
人工牛黄微生物限度检查方法适用性实验*
Applicability of Microbial Limits Test Method for Artificial Bovis Calculus
王永智1,, 吴宏斌1, 邱文娜1, 方朝东1, 饶玲1, 聂利芳2

摘要:

目的 建立人工牛黄微生物限度检查方法。方法 参照《中华人民共和国药典》2015年版四部通则1105,1106,1107规定,对人工牛黄微生物限度检查方法进行适用性实验。通过测试实验菌株回收率,确认所采用的微生物限度检查方法是否适用。结果 人工牛黄微生物限度检查方法为加入中和剂的平皿法测定需氧菌菌数及真菌和酵母菌总数;常规法测定控制菌大肠埃希菌、乙型副伤寒沙门菌、耐胆盐革兰阴性菌。结论 该实验建立了人工牛黄微生物限度检查方法。

关键词: 人工牛黄 ; 微生物限度 ; 控制菌

Abstract:

Objective To establish a microbial limits test method for artificial Bovis Calculus. Methods Study on applicability of microbial limits test method for artificial Bovis Calculus according to the instructions in Chinese Pharmacopoeia 2015 Edition general rules 1105, 1106 and 1107 to validate the applicability of microbial limits test methods for artificial Bovis Calculus through examining the recovery rate of the microbial strains. Results Plating method by adding neutralizing agent could be used for counting bacteria, fungi and yeast.Routine method could be used for testing the control bacteria, such as Escherichia coli, bile-tolerant gram-negative bacteria and Salmonella paratyphi B. Conclusion The microbial limits test methods for artificial Bovis Calculus have been established successfully.

Key words: Artificial ; Microbial limits ; Control bacteria

人工牛黄制剂处方中含有牛胆粉等多种具有抑菌活性的成分[1,2],抑菌成分可能影响供试品中污染的微生物,从而影响微生物检测结果准确性[3]。笔者在检查方法、菌种选择、培养基使用和限度标准制定等方面参照《中华人民共和国药典》2015年版四部通则1105,1106和1107[4]要求,考察微生物限度检查方法的适用性,以期客观反映供试品中的微生物情况,确保检测方法的可控及检测结果的准确性和严谨性[5,6],现报道如下。

1 仪器与材料
1.1 仪器

GNP-9080生化培养箱(上海精宏实验设备有限公司);MJPS 150生化培养箱(上海精宏实验设备有限公司);生物安全柜[型号:Thermo Forma/1300,赛默飞世尔科技(中国)有限公司];超净工作台(型号:SW-CJ-1FD,苏州净化设备有限公司)。

1.2 试药

人工牛黄(江苏某制药有限公司,批号:20170402,20170512,20170527)。

1.3 培养基

胰酪大豆胨琼脂培养基(批号:1702042)、沙氏葡萄糖琼脂培养基 (批号:1702132)、胰酪大豆胨液体培养基(批号:161205)、肠道菌增菌液体培养基 (批号:1603022)、紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基(批号:1601142)、麦糠凯液体培养基(批号:161227)、麦糠凯琼脂培养基(批号:160225)、RV沙门菌增菌液体培养基 (批号:1602152)、木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基 (批号:161130)、三糖铁琼脂培养基(批号:151221)均由北京三药科技开发公司提供。

1.4 实验菌株

金黄色葡萄球菌( Staphylococcusaureus) [CMCC(B)26 003];大肠埃希菌(Escherichia coli) [CMCC (B)44 102];铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)[ CMCC ( B )10 104];枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)[ CMCC(B)63 501];白念珠菌(Candida albicans) [CMCC(F)98 001];黑曲霉(Aspergilllus niger)[CMCC(F)98 003];乙型副伤寒沙门菌(Salmonella paratyphi B ) [CMCC(B)50 094]均购自中国食品药品检定研究院。

2 方法与结果
2.1 需氧菌菌落计数方法适用性实验

2.1.1 菌液的制备 分别接种大肠埃希菌、乙型副伤寒沙门菌、铜绿假单胞菌的新鲜培养物至胰酪大豆胨液体培养基,30~35 ℃培养18~24 h,分别取上述培养物用pH值7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液,依次稀释制成每毫升含菌数<100 菌落形成单位(colony-forming unit,cfu)菌悬液;分别取金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌、铜绿假单胞菌新鲜培养物至胰酪大豆胨液体培养基,30~35 ℃培养18~24 h,分别取上述培养物用pH值7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液稀释制成每毫升含菌数为100~10 000 cfu菌悬液;接种白念珠菌的新鲜培养物至沙氏葡萄糖液体培养基,20~25 ℃培养2~3 d,取此培养物用pH值7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液,稀释制成每毫升含菌100~10 000 cfu的菌悬液;将黑曲霉斜面的新鲜培养物接种至沙氏葡萄糖琼脂斜面培养基上,20~25 ℃培养5~7 d,使大量孢子成熟。加入含0.05%聚山梨酯80的pH值7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液3~5 mL,将孢子洗脱。然后用管口带有薄无菌棉花或纱布能过滤菌丝的无菌毛细吸管吸出孢子悬液至无菌试管,用含0.05%聚山梨酯80的pH值7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液稀释制成每毫升含孢子100~10 000 cfu的孢子悬液。

2.1.2 供试液的制备 称取供试品10 g,加胰酪大豆胨液体培养基至100 mL,充分振摇使混匀,作为1:10供试液;取1:10供试液10 mL,加胰酪大豆胨液体培养基至100 mL,充分振摇使混匀,作为1:100供试液。

2.1.3 计数方法及回收率计算 取稀释级别分别为1:10,1:100供试液9.9 mL与每毫升含菌数为100~10 000 cfu的各实验菌0.1 mL混匀,作为实验组。以稀释级别1:10,1:100 供试液9.9 mL和胰酪大豆胨液体培养基0.1 mL混匀作为供试品对照组;以9.9 mL胰酪大豆胨液体培养基和每毫升含菌数为100~10 000 cfu的各实验菌0.1 mL混匀,同法操作,作为菌液对照组。分别吸取上述各处理组1 mL注入平皿,立即倾注胰酪大豆胨琼脂培养基15~20 mL,混匀,凝固,于30~35 ℃倒置培养3 d,点计菌落数。计算各实验菌回收率,实验组菌回收率(%)=(实验组平均菌落数-供试品对照组平均菌落数)/菌液组平均菌落数×100%。结果见表1。

表1可知,采用稀释级别为1:10及1:100的供试液对人工牛黄需氧菌总数计数方法进行验证,部分实验菌株实验组回收率<50%,不满足《中华人民共和国药典》2015年版四部通则1105中对于实验组菌落回收率的要求。采用含3%聚山梨酯80及0.3%卵磷脂的胰酪大豆胨液体培养基作为稀释液稀释供试品,去除供试品抑菌活性,重新进行需氧菌计数方法适用性实验。

表1 实验组菌落数回收率实验结果
Tab.1 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %
菌种 批号:20170402
稀释级别1:10
批号:20170402
稀释级别1:100
铜绿假单胞菌 0 14.44
金黄色葡萄球菌 2.44 25.02
枯草芽孢杆菌 10.55 95.25
白念珠菌 70.83 77.08
黑曲霉 109.03 100.42

表1 实验组菌落数回收率实验结果

Tab.1 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %

2.2 需氧菌菌落计数方法适用性实验(第2次)

2.2.1 供试液的制备 以含3%聚山梨酯80及0.3%卵磷脂的胰酪大豆胨液体培养基作为稀释液配制样品。取供试品10 g,加上述稀释液至100 mL,充分振摇混匀,作为1:10供试液;取1:10供试品20 mL,加上述稀释液至100 mL,充分振摇使混匀,作为1:50供试液。

2.2.2 计数方法及回收率计算 按“2.1.3”项方法制备各实验菌株实验组、菌液对照组、供试品对照组并培养计数,同时以含3%聚山梨酯80及0.3%卵磷脂的胰酪大豆胨液体培养基代替供试液,作为中和剂对照组,按“2.1.3”项方法处理。分别计算实验组菌株回收率及中和剂对照组菌落数回收率,结果见表2。

表2 实验组菌落数回收率实验结果
Tab.2 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %
菌种 批号:20170402
稀释级别1:10
批号:20170402
稀释级别1:50
中和剂
对照组
铜绿假单胞菌 12.63 95.71 101.72
金黄色葡萄球菌 22.43 93.78 91.43
枯草芽孢杆菌 88.41 102.51 96.77
白念珠菌 93.72 101.22 100.86
黑曲霉 102.03 104.27 97.07

表2 实验组菌落数回收率实验结果

Tab.2 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %

表2可知,以含3%聚山梨酯80及0.3%卵磷脂的胰酪大豆胨液体培养基作为稀释剂,采用1:50 稀释级别进行需氧菌总数计数方法适用性实验时,所有菌种实验组回收率均在50%~200%,采用该方法对批号为20170512,20170527样品再独立进行两次需氧菌计数方法适用性实验,以确认该方法的可靠性。结果见表3。

表3 实验组菌落数回收率实验结果
Tab.3 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %
菌种 批号:20170512
稀释级别1:50
批号:20170527
稀释级别1:50
中和剂
对照组
铜绿假单胞菌 87.46 94.64 103.57
金黄色葡萄球菌 98.32 89.74 97.36
枯草芽孢杆菌 97.51 101.23 103.35
白念珠菌 103.22 98.67 97.46
黑曲霉 94.27 101.26 101.99

表3 实验组菌落数回收率实验结果

Tab.3 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %

2.3 真菌和酵母菌总数计数方法适用性实验

按照“2.2.1”项方法制备供试液;以白念珠菌、黑曲霉作为实验菌株,按照“2.1.3”项方法制备各实验菌株实验组、菌液对照组;按照“2.2.2”项方法制备中和剂对照组。分别吸取上述各组1 mL注入平皿,立即倾注沙氏葡萄糖琼脂培养基15~20 mL,混匀,凝固,于20~25 ℃倒置培养5 d点计菌落数,结果见表4。

表4 实验组菌落数回收率实验结果
Tab.4 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %
菌种 批号:20170402
稀释级别1:10
批号:20170402
稀释级别1:50
中和剂
对照组
白念珠菌 100.26 104.84 90.67
黑曲霉 102.37 98.46 102.26

表4 实验组菌落数回收率实验结果

Tab.4 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %

表4结果可知,以含聚山梨酯80及0.3%卵磷脂的胰酪大豆胨液体培养基作为稀释剂,采用1:10稀释级别进行真菌和酵母菌总数计数方法适用性实验时,所有菌种实验组回收率均符合要求,采用此方法对批号为20170512,20170527的样品再独立进行两次真菌和酵母菌总数计数方法适用性实验,以确认该方法的可靠性。结果见表5。

表5 实验组菌落数回收率实验结果
Tab.5 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %
菌种 号:20170512
稀释级别1:10
批号:20170527
稀释级别1:10
中和剂
对照组
白念珠菌 92.46 102.92 100.36
黑曲霉 94.34 100.46 103.24

表5 实验组菌落数回收率实验结果

Tab.5 Results of recovery test on the bacteria in experimental group %

2.4 控制菌检查方法适用性实验

依据《中华人民共和国药典》2015年版四部通则1107中非无菌微生物限度标准要求[4],本品控制菌检查项目标准为:不得检出大肠埃希菌(1 g);不得检出沙门菌(10 g);耐胆盐革兰阴性菌应小于102 (1 g)。

2.4.1 大肠埃希菌检查方法适用性实验 取1:10供试液10 mL,每毫升含菌数<100 cfu的大肠埃希菌菌悬液1 mL,加至约100 mL胰酪大豆胨液体培养基,作为实验组;取胰酪大豆胨液体培养基10 mL,加至约100 mL胰酪大豆胨液体培养基,作为阴性对照组;取每毫升含菌数<100 cfu大肠埃希菌菌悬液1 mL,加至约100 mL胰酪大豆胨液体培养基作为阳性对照组。以上各处理组均置于30~35 ℃培养18 h。

分别取各组培养物1 mL,接种至含100 mL麦康凯液体培养基内培养,42~44 ℃培养24 h。取麦康凯液体培养物划线接种于麦康凯琼脂平板上30~35 ℃培养18 h,结果见表6。

表6 大肠埃希菌检查方法适用性实验结果
Tab.6 Results of applicability test on the method of Escherichia coli
供试品 20170402 20170512 20170527
实验组 + + +
阳性对照组 + + +
阴性对照组 - - -

+表示培养基有菌生长或呈阳性;-表示培养基无菌生长或呈阴性

+ represents the growth of bacteria in the medium or the positive result;- represents no bacteria growth in the medium of the negative result

表6 大肠埃希菌检查方法适用性实验结果

Tab.6 Results of applicability test on the method of Escherichia coli

2.4.2 乙型副伤寒沙门菌检查方法适用性实验 取10 g供试品和每毫升含菌数不大于100 cfu的沙门菌菌悬液1 mL,置100 mL胰酪大豆胨液体培养基,作为实验组;取10 mL胰酪大豆胨液体培养基,置100 mL胰酪大豆胨液体培养基,作为阴性对照组;取每毫升含菌数不大于100 cfu沙门菌菌悬液1 mL,置100 mL胰酪大豆胨液体培养基,作为阳性对照组;各处理组置于30~35 ℃培养18 h。

分别取上述培养物各0.1 mL,分别接种至10 mLRV沙门菌增菌液体培养基,30~35 ℃培养18 h。取少量RV沙门菌增菌液体培养物划线接种于木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂平板上,30~35 ℃培养18 h。用接种针挑取疑似菌落于三糖铁琼脂培养基高层斜面上进行斜面和高层穿刺接种,培养18 h。结果见表7。

表7 乙型副伤寒沙门菌检查方法适用性实验结果
Tab.7 Results of applicability test on the method of Salmonella paratyphi B
供试品 20170402 20170512 20170527
实验组 + + +
阳性对照组 + + +
阴性对照组 - - -

+表示培养基有菌生长或呈阳性;-表示培养基无菌生长或呈阴性

+ represents the growth of bacteria in the medium or the positive result;- represents no bacteria growth in the medium of the negative result

表7 乙型副伤寒沙门菌检查方法适用性实验结果

Tab.7 Results of applicability test on the method of Salmonella paratyphi B

2.4.3 耐胆盐革兰氏阴性菌检查方法适用性实验 称取供试品10 g,加入胰酪大豆胨液体培养基至100 mL制成1:10供试液,混匀,20~25 ℃培养2 h,分别取此供试液1,0.1,0.01 mL(相当于供试品0.1,0.01,0.001 g),接种至10 mL肠道菌增菌液体培养基,分别加入不大于100 cfu的大肠埃希菌悬液1 mL,作为实验组,同法制备铜绿假单胞菌实验组;将1 mL胰酪大豆胨液体培养基接种至肠道增菌液体培养基10 mL中,加入不大于100 cfu的大肠埃希菌悬液1 mL,作为阳性对照组,同法制备铜绿假单胞菌阳性对照组;将1 mL胰酪大豆胨液体培养基接种至肠道增菌液体培养基10 mL中,作为阴性对照组。以上各处理组于30~35 ℃培养24 h。

分别将各组培养物划线接种至紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基平板上,于30~35 ℃培养24 h。结果见表8。

表8 耐胆盐革兰阴性菌检查方法适用性实验结果
Tab.8 Results of applicability test on the method of bile-tolerant gram-negative bacteria
供试品 浓度 大肠埃希菌
20170402 20170512 20170527
实验组 0.1 + + +
0.01 + + +
0.001 + + +
阳性对照组 + +
阴性对照组 - -
供试品 浓度 铜绿假单胞菌
20170402 20170512 20170527
实验组 0.1 + + +
0.01 + + +
0.001 + + +
阳性对照组 + + +
阴性对照组 - - -

+表示培养基有菌生长或呈阳性;-表示培养基无菌生长或呈阴性

+ represents the growth of bacteria in the medium or the positive result;- represents no bacteria growth in the medium of the negative result

表8 耐胆盐革兰阴性菌检查方法适用性实验结果

Tab.8 Results of applicability test on the method of bile-tolerant gram-negative bacteria

3 讨论

采用平皿法对人工牛黄进行微生物限度检查方法适用性检查发现,稀释级别为1:10及1:100的实验组均有部分实验菌株回收率不满足50%~200%的要求。通过以含3%聚山梨酯80及0.3%卵磷脂胰酪大豆胨液体培养基作为稀释液溶解、稀释样品,结果表明当稀释级别为1:50时,成功消除了人工牛黄的抑菌活性,各实验菌株的回收率均满足要求。

在进行微生物限度检查方法适用性实验时,应根据药品不同的抑菌活性采用适宜的方法。对于无抑菌活性的药品,可直接采用平皿法进行检查方法适用性验证[7]。如药品有抑菌活性则需要通过增大稀释液或培养基体积、加入中和剂或灭活剂、采用薄膜过滤法或上述几种方法的联合使用等手段去除样品的抑菌活性[4],才能反映药品真实的微生物污染情况[8] 并验证药品抑菌作用去除的有效性,以及去除方法对污染菌生长检出的影响[6],若使用中和剂或灭活剂,实验中应设中和剂或灭活剂对照组,即取相应量稀释液替代供试品同实验组操作,以确认其有效性和对微生物无毒性。

The authors have declared that no competing interests exist.

参考文献

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本文综述了近年来人工牛黄及其制剂中胆酸含量测定方法的研究概况,主要包括紫外-可见分光光度法(UV-VIS)、薄层扫描法(TLCS)、高效液相色谱法(HPLC),毛细管电泳法等,为含人工牛黄的中成药制剂质量标准研究提供了确切的依据。
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目的:建立用紫外分光光度计测定熊胆、猪胆粉、牛胆粉、鸡胆粉中总胆酸含量的方法并评价抑菌效果。方法:分别以胆酸和熊去氧胆酸为对照品,采用加入硫酸-水(50∶50),在75℃水浴加热18 min反应显色,于388 nm波长处测定熊胆粉等动物胆粉中总胆酸的含量;同时以金黄色葡萄球菌和大肠杆菌为实验菌种,在650 nm波长处测定OD值以考察体外抑菌效果。结果:胆酸在5.7~34.3μg·mL-1范围内有良好的线性关系,线性方程为Y=41.573 X-0.166 1,r=0.999 5;熊去氧胆酸在4.7~23.5μg.mL-1范围内有良好的线性关系,线性方程为Y=24.957 X-0.067 9,r=0.999 6;胆酸及熊去氧胆酸在熊胆粉、牛胆粉、猪胆粉、鸡胆粉中的平均回收率及RSD值分别为:98.9%,100.5%,1.59%,1.07%;97.7%,98.8%,1.08%,1.12%;104.1%,99.4%,2.00%,1.67%;102.9%,103.6%,1.22%,1.78%。熊胆粉等4种动物胆粉对金黄色葡萄球菌和大肠杆菌均有明显的抑菌作用,但差异无显著性。结论:本法准确,简便,重复性好,可用于熊胆等4种动物胆粉中总胆酸的含量测定,熊胆等4种动物胆粉均可抑制金黄色葡萄球菌和大肠杆菌的生长。
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目的建立六味地黄胶囊与杞菊地 黄胶囊微生物限度与控制菌的检查方法。方法采用常规法与培养基稀释法对2种中药制剂进行微生物限度方法验证,采用直接接种法进行控制菌方法验证。结果建立 了2种中药制剂的微生物限度与控制菌检查方法。结论六味地黄胶囊采用培养基稀释法(0.5mL/皿)测定细菌数,常规法测定霉菌及酵母菌数;杞菊地黄胶囊 采用培养基稀释法(0.2mL/皿)测定细菌数,培养基稀释法(0.5mL/皿)测定霉菌及酵母菌数。采用直接接种法对2种中药制剂进行控制菌(大肠埃希 菌与大肠菌群)检测。
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目的建立7种具有抑菌成分中成药的微生物限度检查方法。方法按照2010年版《中国药典》的规定测定各品种对5个规定试验菌株的回收率,并对其控制菌检查方法进行验证。结果复方川贝精片、复方穿心莲片、夏桑菊颗粒这3种供试品无抑菌作用,可采用常规方法进行微生物限度检查;吉诺通、维C银翘片、五塔标行军散、普济丸对细菌的抑菌作用较强,需采用静置法或离心沉淀法与薄膜过滤法联用去除其抑菌作用后才能进行微生物限度检查。结论本文建立了7种具有抑菌成分中成药的微生物限度检查方法,可有效控制其质量。
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Objective: To establish microbial limit test method for 10 kinds of traditional Chinese medicine preparations. Method: According to the rules of the 2010 edition ‘Chinese Pharmacopoeia’,microbial limit test method for 10 kinds of traditional Chinese medicine preparations were verified. Result: According to sample preparation method, recovery rate of each test bacteria samples was up to 70%. Conclusion: Manyan mixture, allergic rhinitis mixture,germinal UFA mixture and Yanyangke mixture could use conventional method for detecting;Tiaozhi oral liquid,Xiaoban mixture,Guwei mixture,Jianpi Pinggan mixture and nasosinusitis mixture could take culture medium dilution method for inspection;Dujieqing oral liquid could check by membrane filtration method.All varieties of control bacteria examination could be detected by conventional method.
[本文引用:1]
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人工牛黄
微生物限度
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Microbial limits
Control bacteria

作者
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吴宏斌
邱文娜
方朝东
饶玲
聂利芳

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FANG Chaodong
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