目的 制备异甘草素聚乳酸纳米粒,考察其在大鼠体内吸收生物利用度。方法 采用改良的自乳化溶剂挥发法制备异甘草素聚乳酸纳米粒。激光粒度分析仪测定平均粒径及分布、Zeta电位,并对其包封率、载药量和体外释放情况进行考察。比较异甘草素原料药和异甘草素聚乳酸纳米粒药动学行为及经大鼠灌胃后的吸收生物利用度。结果 异甘草素聚乳酸纳米粒平均粒径为(190.22±3.09) nm,多分散性指数(PDI)为0.149±0.039,Zeta电位为(-12.5±0.27) mV,包封率为(74.94±1.18)%,载药量为(8.45±0.66)%。异甘草素聚乳酸纳米粒在体外具有缓慢释药特征,释药过程符合Weibull模型:
Objective To prepare nanoparticles of isoliquiritigenin polylactic acid, and study the effects on the bioavailability of isoliquiritigenin in rats. Methods Isoliquiritigenin polylactic acid nanoparticles were prepared by self-emulsifying solvent volatilization method.The particle size and Zeta potential were determined by laser particle size analyzer.The encapsulation efficiency, drug loading and drug release
纳米给药系统是指采用高分子材料作为载体,通过一定的制剂技术而制备成粒径在10~1000 nm之间的微粒[6]。可增加药物的溶解度及稳定性,促进体内药物吸收,实现被动靶向等。聚乳酸(polylactic acid,PLA)作为可生物降解的一种高分子材料,体内最终代谢为水和二氧化碳,被誉为“绿色材料”,已被美国食品药品管理局(FDA)批准用于医用材料和各种药物制剂的制备。王学清等[7]以上市产品新山地明(Neoral®)为参比制剂,对环孢素聚乳酸纳米粒在大鼠体内生物利用度进行了研究,结果发现两者生物利用度相似,但环孢素聚乳酸纳米粒采用了生物降解材料,与Neoral®比较避免了表面活性剂Gremophor RH40带来的毒性与变态反应。另外,根据不同药物不同的理化性质和药理作用,可通过调整聚乳酸相对分子质量的大小进而达到控制纳米粒释药速率的目的。邢洁等[8]采用分子质量相对较小的聚乳酸制备的冬凌草甲素聚乳酸纳米粒,体外释放速率明显加快,有助于快速达到较高的血药浓度,迅速发挥镇痛药效。戴东波等[9]采用分子质量相对较高的聚乳酸制备的盐酸阿霉素聚乳酸纳米粒,体外缓释特征非常明显,48 h内累积释放度为55.8%,体内药动学研究结果显示纳米粒在体内消除显著减缓,体内循环时间显著延长。本研究以聚乳酸为纳米载体,制备异甘草素聚乳酸纳米粒(isoliquiritigenin-loaded polylactic acid nanopartic-les),对粒径分布、Zeta电位、体外释药等进行研究。与异甘草素混悬液对比,研究异甘草素聚乳酸纳米粒体内药动学行为。为异甘草素研究、开发提供新的研究策略,也为其他难溶性中药活性成分提供参考[10]。
高效液相色谱仪(安捷伦仪器公司,型号:Agilent 1260,二极管阵列检测器);电子天平(赛多利斯精密仪器北京有限公司,型号:SQP,感量:0.1 mg);涡旋混合器(其林贝尔仪器制造有限公司,型号:VORTEX-5);超声仪(宁波新知科仪器研究所,型号:JY92-II);粒度分析仪(马尔文科学仪器有限公司,型号:Master sizer 2000);氮气吹扫仪(杭州市奥威仪器有限公司,型号:MD202-3);高速台式冷冻离心机(北京时代北利离心机有限公司,型号:GTR22-1)。
异甘草素对照品(天津一方科技有限公司,批号:20160824,含量:98.8%);聚乳酸(山东岱罡科技有限公司,批号:2017021522,相对分子质量3000);poloxamer 188(F68,德国巴斯夫有限公司,批号:T20151205);甲醇(色谱级),其他试剂均为分析纯。
清洁级SD大鼠,雌雄兼用,体质量(300±20)g,购自河南省动物实验中心,实验动物生产许可证号:SCXK(豫)2016-0001。所有大鼠饲养在清洁级实验环境,温度20~24 ℃,湿度40%~55%。
色谱柱:Hypersil ODS C18(200 mm×4.6 mm,5 μm);流动相:甲醇-0.5%甲酸溶液(44:56);波长:372 nm;体积流量:1.0 mL·min-1;柱温:30 ℃;进样量:20 μL。
取异甘草素聚乳酸纳米粒混悬液1.0 mL,18 000 r·min-1(
包封率(%)=(
其中
2.3.1 异甘草素聚乳酸纳米粒的制备工艺 精密称取异甘草素40 mg和适量聚乳酸溶于30 mL丙酮溶液中(经重蒸处理),搅拌、溶解后缓慢加入到一定体积、适量浓度的poloxamer 188乙醇-水相中。滴加完毕后,于冰浴中超声15 min。减压旋转蒸发除有机溶剂,浓缩。微孔滤膜滤过,即得异甘草素聚乳酸纳米粒。
2.3.2 正交实验优化制备工艺 结合前期异甘草素聚乳酸纳米粒单因素实验考察情况,以包封率为考察指标,选择处方中聚乳酸载体用量(A,mg),表面活性剂poloxamer 188浓度(B,%),乙醇-水体积(C,mL),乙醇-水比例(D)4个因素为主要影响因素,每个因素设置3个考察水平,采用L9(34) 正交实验进一步优化异甘草素聚乳酸纳米粒的处方,因素水平和实验设计见
根据
2.4.1 载药量、粒径分布及Zeta电位 按照“2.2”项下测定方法,测得异甘草素聚乳酸纳米粒载药量为(8.45±0.66)%。取异甘草素聚乳酸纳米粒混悬液,纯化水稀释,置于比色池中。测定聚乳酸纳米粒粒径和Zeta电位(
图1 异甘草素聚乳酸纳米粒的粒径分布
Fig.1 Particle size distribution of isoliquiritigenin-loaded polylactic acid nanoparticles
图2 异甘草素聚乳酸纳米粒的Zeta电位
Fig.2 Zeta potential of isoliquiritigenin-loaded polylactic acid nanoparticles
2.4.2 异甘草素聚乳酸纳米粒体外释药行为 取异甘草素原料药混悬液及其聚乳酸纳米粒混悬液2 mL,异甘草素含有量均为2 mg,置于经处理好的透析袋中,两端扎紧。避光操作,以 2.0%十二烷基硫酸钠溶液150 mL为溶出介质,转速设置为100 r·min-1,温度为(37±1)℃。分别在0,0.25,0.5,1,2,3,4,6,8,12,24,36和48 h取外液2.0 mL,及时补充2.0 mL的空白释放介质。测定各时间点的药物含量,并计算各时间点的累积释放度,绘制体外溶出曲线(
图3
异甘草素及其聚乳酸纳米粒的体外释放曲线(
Fig.3
2.4.3 释药模型拟合 对异甘草素聚乳酸纳米粒体外释药分别采用零级、一级、Higuchi及Weibull模型进行拟合,研究发现(
2.5.1 血浆样品的处理 精密量取血浆样品100 μL和内标溶液50 μL置于具塞尖底离心管中,加入甲醇1.5 mL,以沉淀蛋白,涡旋混合4 min,8000 r·min-1离心15 min(
2.5.2 对照品溶液的配制及标准曲线的绘制 配制浓度为10 μg·mL-1异甘草素对照品溶液,进一步稀释、配制浓度分别为50.0,100.0,250.0,500.0和1000.0 ng·mL-1的系列异甘草素的血浆样品。另精密配制浓度为200 ng·mL-1苯甲酸钠内标溶液。以异甘草素和苯甲酸钠峰面积比(
2.5.3 方法学验证 以异甘草素的低(50.0 ng·mL-1)、中(500.0 ng·mL-1)、高(1000.0 ng·mL-1)浓度考察日内精密度RSD值。结果显示RSD值分别为7.28%,4.36%和5.11%(
2.5.4 给药方案及样品采集 取SD大鼠随机分为2组,每组6只。实验室适应2 d,禁食,自由饮水。按60 mg·kg-1灌胃异甘草素原料药混悬液和异甘草素聚乳酸纳米粒混悬液。分别于0,0.5,0.75,1,1.5,2,3,4,6,8,10和12 h各时间点眼眶采血约0.3 mL,置于肝素化处理后的离心管中。以转速为3500 r·min-1离心2 min。分取上层血浆,于-20 ℃冰箱冷冻保存,测定前复溶[10,11]。
2.5.5 药动学曲线及主要参数 分别测定异甘草素及其聚乳酸纳米粒血浆样品血药浓度,绘制药动学曲线。达峰浓度(
图4
异甘草素及其聚乳酸纳米粒的平均药物浓度-时间曲线(
Fig.4
Mean plasma concentration-time curves of isoliquiritigenin and its polylactic acid nanoparticles(
异甘草素聚乳酸纳米粒系采用改良的自乳化溶剂扩散法进行制备,推测形成纳米粒的过程为:在搅拌的条件下,将溶有异甘草素和载体的油相加入到含乳化剂的水相中,水溶性溶剂自发扩散,大大降低了两相之间的表面张力,同时产生界面骚动,最终形成纳米级别的乳滴。随着有机溶剂的不断挥发,纳米级别乳滴从
水相中逐渐析出。由于异甘草素分子结构中有3个羟基与苯环直接相连,具有较强的极性,容易与聚乳酸分子结构中羰基形成氢键[13,14],增强了两者的亲和力,乳滴固化后成为聚乳酸纳米粒。可以看出,载体和药物能否从水相中同步析出,是影响包封率的影响因素之一。由于载体聚乳酸在乙醇不溶,而在丙酮溶解度较好。在丙酮体积不变的情况下,通过调整乙醇有机溶剂的比例,进而使载体和药物能近乎同步从水相中析出形成纳米粒。这也解释了正交实验考察结果中乙醇-水比例对异甘草素聚乳酸纳米粒包封率具有极显著性差异的原因。刘月新等[15]制备的吡喹酮聚乳酸纳米粒包封率仅为46.74%,这可能与有机溶剂(丙酮/乙醇)比例不合适有关。因此,除了药物/载体比、油相/水相体积比、表面活性剂浓度等因素会影响聚乳酸纳米粒包封率外[15,16],有机溶剂的比例也是需要重点考察的因素之一。本研究对高包封率的聚乳酸纳米粒的研究有一定的借鉴意义[17]。